HieffNGS®C130P1UltimaDNALibraryPrepKitforMGI®是针对MGI®高通量测序平台定向优化而成的新一代建库试剂盒。 作为全新的升级版本,本产品采用高质量的酶学组成,简化的操作流程,可显著提高低质量样本文库转化率与扩增效率,具 有广泛的样本适应性,同时兼容FFPE、cfDNA、ChIPDNA等样本,助力获得优异的测序数据。 适用500pg-1μgDNA样本 兼容cfDNA、FFPE等低质量样本 高效的文库转化率与扩增效率 多样本验证可获得优异的文库与测序数据 严格的批次性能与稳定性质控 产品信息 货号13508ES16/13508ES96 规格16T/96T 组分信息 组分编号组分名称13508ES1613508ES96 13508-AEndprepMix160μL960μL 13508-BLigationEnhancer480μL4×720μL 13508-CFastT4DNALigase80μL480μL 13508-D2×UltimaHFAmplificationMix400μL4×600μL 13508-EPrimerMixforMGI®80μL480μL
-25~-15℃保存,有效期1年。 注意事项 一.关于操作 1.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。 2.请于使用前将试剂盒各组分置于室温解冻。解冻后上下颠倒数次充分混匀,短暂离心后置于冰上待用。 3.配制各步骤反应液时推荐使用移液器吹打混匀或轻轻振荡,剧烈振荡可能会造成文库产出下降。 4.为避免样品交叉污染,推荐使用带滤芯的枪头,吸取不同样品时请更换枪头。 5.推荐在带热盖的PCR仪中进行各步骤反应,使用前应预热PCR仪至反应温度附近。 6.PCR产物因操作不当极容易产生气溶胶污染,进而影响实验结果准确性。推荐将PCR反应体系配制区和PCR产物纯化检 测区进行强制性的物理隔离;使用专用的移液器等设备;并定时对各实验区域进行清洁(使用0.5%次氯酸钠或10%漂白剂 进行擦拭清理),以保证实验环境的洁净度。 7.本产品仅用作科研用途! 二、关于DNA片段化 1.本试剂盒中兼容机械法及酶切法片段化的DNA。 2.本试剂盒兼容范围为500pg–1μgInputDNA。应尽可能使用A260/A280=1.8-2.0的高质量InputDNA。表1中列举www.yeasen.comPage2of9 了将本试剂盒应用于常见应用中推荐的InputDNA量。 表1常见应用中推荐InputDNA量 应用样本类型推荐InputDNA量 全基因组测序复杂基因组50ng-1μg 靶向捕获测序复杂基因组10ng-1μg 全基因组测序,靶向捕获测序FFPEDNA≥50ng 全基因组测序,靶向捕获测序cfDNA/ctDNA≥500pg 全基因组测序微生物基因组≥1ng 全基因组测序PCR-free测序高质量DNA≥100ng 免疫共沉淀测序ChIP-DNA≥500pg 靶向测序扩增子≥500pg 【注】:上表为使用高质量DNA时推荐的InputDNA量,当InputDNA质量较差或需要进行片段分选时,应适当上调使用量。 3.InputDNA特指投入末端修复/dA尾添加步骤中的DNA。 4.InputDNA制备过程中带入的高浓度金属离子螯合剂或其他盐,可能会影响末端修复/dA尾添加步骤反应效率,建议DNA 片段化后进行磁珠纯化或分选。当使用机械法进行DNA片段化且产物不进行纯化或长度分选而直接建库时,请将DNA稀释 在TEBuffer中进行片段化,请勿在灭菌超纯水中进行。当使用酶切法进行片段化且产物不进行纯化或长度分选而直接建库 时,请确认StopBuffer中不包含过量的金属离子螯合剂。如条件不满足,可先将片段化产物纯化或长度分选后溶于TEbuffer 或灭菌超纯水中(≤50μL),再进行文库构建。 三、关于接头连接 1.目前华大智造有2种序号的接头:1-128和501-596。关于其使用要求,请详见华大智造“关于Adapter使用”有关说明 或咨询本公司。此外,华大智造申明:2种接头由于设计工艺不同,禁止混用,否则测序数据无法拆分! 2.Adapter的质量和使用浓度直接影响连接效率及文库产量。请按照表2和实际DNA投入量确实确定接头用量,需要稀释 接头时,请用TEbuffer对接头进行稀释。 表2500pg-1μgInputDNA推荐的Adapter使用量 InputDNA10μMAdapter稀释倍数稀释后投入量(μL) 31ng-1μg不稀释5 11-30ng55 3-10ng105 0.5-2ng205 四、DNA磁珠纯化与分选(Bead-basedCleanUpandSizeSelection) 1.DNA片段长度分选步骤可选择在末端修复/dA尾添加之前,或接头连接后,或文库扩增后进行。 2.当InputDNA质量≥50ng,您可选择在接头连接后分选;如InputDNA质量<50ng,建议您在文库扩增后进行分选。 3.LigationEnhancer中包含高浓度的PEG,会对双轮磁珠分选产生显著影响。因此,如在接头连接后进行长度分选,必须 先进行纯化步骤,再进行双轮分选步骤;如在末端修复/dA尾添加之前或文库扩增后进行长度分选,可直接进行双轮磁珠分 选步骤。 4.磁珠使用前应先平衡至室温,否则会导致得率下降、分选效果不佳。 5.磁珠每次使用前都应充分振荡混匀或使用移液器上下吹打充分混匀。 6.转移上清时,请勿吸取磁珠,即使微量残留都将影响后续文库质量。www.yeasen.comPage3of9 7.磁珠漂洗使用的80%乙醇应现用现配,否则将影响回收效率。 8.进行长度分选时,初始样品体积应尽量≥100μL,不足时请用超纯水补齐。以防因样品体积太小导致移液误差增大。 9.产物洗脱前应将磁珠置于室温干燥。干燥不充分容易造成无水乙醇残留影响后续反应;过分干燥又会导致磁珠开裂进而 降低纯化得率。通常情况下,室温干燥3-5min足以让磁珠充分干燥。 10.DNA纯化或长度分选产物如需保存,可使用TEBuffer洗脱,产物可于4°C可保存1-2周,-20°C可保存1个月。 五、关于文库扩增(LibraryAmplification) 1.是否需要进行文库扩增取决于InputDNA量、应用需要等因素。当InputDNA<200ng时,推荐进行文库扩增;当Input DNA≥200ng或者不需要进行文库扩增时,可不进行文库扩增。 2.文库扩增步骤需要严格控制扩增循环数。循环数不足,将导致文库产量低;循环数过多,又将导致文库偏好性增加、重 复度增加、嵌合产物增加、扩增突变积累等多种不良后果。表3列举了本试剂盒,获得100ng或1000ng文库的所需循环 数。 表3500pg-1μgInputDNA获得100ng或1000ng产物扩增循环数推荐表 InputDNA(IntoEndPreparation)Numberofcyclesrequiredtogenerate1μg 100ng1000ng 1μg03-4 500ng04-5 250ng1-45-7 100ng2-56-8 50ng4-78-10 10ng6-89-12 5ng7-1011-14 1ng9-1112-15 500ng11-1314-16 【注】:建库过程中进行过长度分选时参照较高循环数扩增。 六、关于文库质检(LibraryQualityAnalysis) 1.通常情况下,构建好的文库可通过长度分布检测和浓度检测来进行质量评价。 2.文库浓度检测可使用:基于双链DNA荧光染料的方法,如Qubit®、PicoGreen®等;基于qPCR绝对定量的方法。 3.文库浓度检测不可使用:基于光谱检测的方法,如NanoDrop®等。 4.推荐使用qPCR方法进行文库浓度检测:Qubit®、PicoGreen®等基于双链DNA荧光染料的浓度测定方法时,无法有效区 分单端连接Adapter的产物、两端均未连接Adapter的产物以及其他不完整双链结构产物;qPCR绝对定量基于PCR扩增 原理,仅定量样品中两端Adapter完整的文库(即可测序的文库),可排除单端或双端都不连接Adapter的不可测序文库 的干扰。 5.文库长度分布检测,可通过AgilentBioanalyzer2100等基于毛细管电泳或微控流原理的设备进行检测。www.yeasen.comPage4of9 使用说明 一、自备材料 1.纯化磁珠:Cat#12601,HieffNGS®DNASelectionBeads或Cat#A63880,AMPureXPBeads或其他等效产品。 2.DNA质控:AgilentTechnologies2100Bioanalyzer或其他等效产品。 3.DNAAdapter:详情请咨询华大智造或本公司。 4.其他材料:无水乙醇、灭菌超纯水、TEBuffer(10mMTris-HCl,pH8.0-8.5+0.1mMEDTA)、低吸附EP管、PCR管、 磁力架、PCR仪等。 二、操作流程 图1UltimaDNA建库试剂盒操作流程 三、操作步骤 3.1末端修复/dA尾添加(EndPreparation/dA-Tailing) 该步骤将InputDNA末端补平,并进行5’端磷酸化和3’端加dA尾。 1.将表4中各试剂解冻后,颠倒混匀,置于冰上备用。 2.于无菌PCR管中配制表4所示反应体系。 表4末端修复/dA尾添加PCR反应体系 名称体积(μL) FragmentedDNAx EndprepMix10 ddH2OUpto60 3.使用移液器轻轻吹打或振荡混匀,并短暂离心将反应液离心至管底。 4.将上述PCR管置于PCR仪,设置表5所示反应程序,进行末端修复/dA尾添加反应。www.yeasen.comPage5of9 表5末端修复/dA尾添加PCR反应程序 温度时间 热盖105°COn 30°C20min 72°C20min 4°CHold 3.2接头连接(AdapterLigation) 该步骤将3.1步骤的产物末端,连接特定的MGI®接头。 1.根据InputDNA量按表2稀释Adapter至合适浓度。 2.将表6中各试剂解冻后颠倒混匀,置于冰上备用。 3.于3.1步骤PCR管中配制表6所示反应体系。 表6AdapterLigation体系 名称体积(μL) dA-tailedDNA(3.1步骤产物)60 LigationEnhancer30* FastT4DNALigase5 DNAAdapter5 【注】:*LigationEnhancer比较粘稠,请上下颠倒、振荡,充分混匀并瞬时离心后使用。 4.使用移液器轻轻吹打或振荡混匀,并短暂离心将反应液收集至管底。 5.将PCR管置于PCR仪中,设置表7所示反应程序,进行接头连接反应: 表7AdapterLigationPCR反应程序 温度时间 热盖Off 20°C15min 4°CHold 【注】:当InputDNA量较低,实验效果不理想时,可尝试将连接时间延长一倍。 3.3连接产物磁珠纯化(PostLigationCleanUp) 该步骤使用磁珠对接头连接产物进行纯化或分选。纯化可除去未连接的Adapter或AdapterDimer等无效产物。 3.3.1纯化操作步骤: 1.准备工作:将HieffNGS®DNASelectionBeads磁珠由冰箱中取出,室温平衡至少30min。配制80%乙醇。 2.涡旋振荡或充分颠倒磁珠以保证充分混匀。 3.吸取60μLHieffNGS®DNASelectionBeads(0.6×,Beads:DNA=0.6:1)至AdapterLigation产物中,涡旋混匀或移 液器吹打10次混匀,室温孵育5min。 4.将PCR管短暂离心并置于磁力架中分离磁珠和液体,待溶液澄清后(约5min),小心移除上清。 5.保持PCR管始终置于磁力架中,加入200μL新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠,室温孵育30sec后,小心移除上清。 6.重复步骤5,总计漂洗两次。 7.保持PCR管始终置于磁力架中,开盖空气干燥磁珠至刚刚出现龟裂(不超过5min)。 8.将PCR管从磁力架中取出,进行洗脱: 1)如产物无需进行片段分选,直接加入21μLddH2O,涡旋振荡或使用移液器轻轻吹打至充分混匀,室温静置5min。www.yeasen.comPage6of9 【注:如纯化产物如需保存,可使用TEBuffer洗脱】。将PCR管短暂离心并置于磁力架中静置,待溶液澄清后(约5min), 小心移取20μL上清至新PCR管中,切勿触碰磁珠。 2)如产物需进行双轮分选,加入102μLddH2O,涡旋振荡或使用移液器轻轻吹打至充分混匀,室温静置5min。【注: 如纯化产物如需保存,可使用TEBuffer洗脱】。将PCR管短暂离心并置于磁力架中静置,待溶液澄清后(约5min),小 心移取100μL上清至新PCR管中,切勿触碰磁珠。 3.3.2双轮分选操作步骤: 1.准备工作:将HieffNGS®DNASelectionBeads磁珠由冰箱中取出,室温平衡约30min。配制80%乙醇。 2.请涡旋振荡或充分颠倒磁珠以保证混匀。 3.根据DNA片段长度要求,参考表8向上述100μLDNA上清中加入第一轮分选磁珠,涡旋混匀或移液器吹打10次混匀 表8磁珠文库分选推荐比例 DNA文库插入片段大小150-250bp200-300bp300-400bp DNA文库大小230-330bp280-380bp380-480bp 第一轮体积比(Beads:DNA)0.78×0.68×0.58× 第二轮体积比(Beads:DNA)0.20×0.20×0.20× 【注】:表中“×”表示样品DNA体积。如文库插入片段长度为200bp,样品DNA体积为100μL,则第一轮分选磁珠使用体积为0.78×100μ L=78μL;第二轮分选磁珠使用体积为0.20×100μL=20μL;表中所推荐比例是针对于AdapterLigatedInsertDNA(PostLigation),如果用户 在接头连接前进行分选,请采用HieffNGS®DNASelectionBeads(Cat#12601)说明书中推荐的比例。 4.室温孵育5min。 5.将PCR管短暂离心并置于磁力架中,待溶液澄清后(约5min),小心转移上清到干净的离心管中。 6.参考表8向上清中加入第二轮分选磁珠。 7.涡旋混匀或移液器吹打10次混匀,室温静置5min。 8.将PCR管短暂离心并置于磁力架中,待溶液澄清后(约5min),小心移除上清。 9.保持PCR管始终处于磁力架中,加入200μL新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠,室温孵育30sec,小心移除上清。 10.重复步骤9。 11.保持PCR管始终处于磁力架中,开盖干燥磁珠至刚刚出现龟裂(约5min)。 12.将PCR管从磁力架中取出,加入适量21μLddH2O,涡旋振荡或使用移液器轻轻吹打充分混匀,室温静置5min。 13.将PCR管短暂离心并置于磁力架中分离磁珠和液体。待溶液澄清后(约5min),小心转移20μL上清至干净的管中。 3.4文库扩增(LibraryAmplification) 该步骤将对纯化或长度分选后的接头连接产物进行PCR扩增富集。 1.将表9中试剂解冻后颠倒混匀,置于冰上备用。 2.于无菌PCR管中配制表9所示反应体系。 表9PCR扩增反应体系 3.使用移液器轻轻吹打或振荡混匀,并短暂离心将反应液收集至管底。 4.将PCR管置于PCR仪中,设置表10所示反应程序,进行PCR扩增。名称体积(μL) 2×UltimaHFAmplificationMix25 PrimerMixforMGI®5 AdapterLigatedDNA(3.3步骤产物)20www.yeasen.comPage7of9 表10PCR扩增反应程序 温度时间循环数 98°C1min1 98°C10sec 参照注意事项中表360°C30sec 72°C30sec 72°C5min1 4°CHold- 3.5扩增产物磁珠纯化或分选(PostAmplificationCleanUp/SizeSelection) 同3.3.1步骤中纯化操作步骤。使用HieffNGS®DNASelectionBeads(0.9×,Beads:DNA=0.9:1)纯化文库扩增产物。 如需分选,操作方法同3.3.2双轮分选步骤(纯化步骤可省略)。 3.6文库质量控制 通常情况下,构建好的文库可通过浓度检测和长度分布检测来进行质量评价。 3.7文库环化 使用HieffNGS®Fast-PaceDNACyclizationKitforMGI®(Cat#13341)或其他等效产品进行文库单链环化反应。 3.8参考实例 使用HieffNGS®C130P1UltimaDNALibraryPrepKitforMGI®对50ngE.coli超声样本建库,结果使用Agilent Bioanalyzer2100进行检测。 图2UltimaDNA建库试剂盒样本及PCR纯化产物(分选前后)Agilent2100检测结果 www.yeasen.comPage8of9 备忘录: ———————————————————————————————————————— ———————————————————————————————————————— ———————————————————————————————————————— 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